Пыльца

Статья на основе материалов из Википедии

Пыльца некоторых растений: подсолнечника (Helianthus annuus), ипомеи (Ipomoea purpurea), сидальцеи (Sidalcea malviflora), лилии золотистой (Lilium auratum), энотеры кустарниковой (Oenothera fruticosa) и клещевины (Ricinus communis)

Пыльца яблони, окрашенная ацетокармином, под микроскопом

Пыльца́, цветень  — скопление пыльцевых зёрен семенных растений[4]. Пыльцевое зерно представляет собой мужской гаметофит, развивающийся в микроспорангии из микроспоры и выполняющий функцию опыления, то есть оплодотворения женского гаметофита, находящегося в семязачатке.

Строение

Пыльца развивается в пыльниках тычинок. Граничащий с наружной кожицей слой молодого пыльника перегородками делится на два слоя, из которых наружный производит стенку пыльцевой камеры, а внутренний даёт начало археспорию, состоящему из производящих, или материнских, клеток пыльцы. Затем материнские клетки пыльцы обыкновенно увеличиваются в размере и утолщают оболочку. Они или остаются соединёнными между собой (большинство двудольных), или разъединяются (многие однодольные растения). Каждая производящая клетка затем делится на четыре специально производящие клетки или через повторное деление на два (у однодольных), или же вокруг получившихся путём деления четырёх ядер возникают сразу оболочки четырёх клеток (у большинства двудольных). Содержимое внутри каждой специальной производящей клетки облекается новой оболочкой, дифференцирующейся на наружный толстый слой, экзину, и внутренний — интину.

Большей частью получившиеся пыльцевые клетки вскоре вполне разъединяются, иногда же остаются соединёнными по четыре (тетрадами, или четвёрками), например, у многих орхидей (тайник, гнездовка), y рогоза, анноны, рододендрона и др. У орхидей из трибы Orchideae пыльцевые клетки соединены в большом числе в пыльцевые тельца (лат. massulae), которые, в свою очередь, соединены между собой в одну массу, так называемый поллинарий, заполняющую всю пыльцевую камеру. То же наблюдается у многих асклепиевых.

Величина пыльцевых клеток колеблется от 0,0025 до 0,25 мм. Они преимущественно эллипсоидальной или же шаровидной формы, иногда гранистые или угловатые. Внешний слой, экзина, часто бывает покрыт разнообразной скульптурой в виде гребешков, бугорков, шипов и т. д., иногда же сухой и гладкий.

Пыльца как передатчик экологической информации у растений

По существующим в классической генетике представлениям, пыльца несет только генетическую информацию, и количество пыльцы, попадающее на женский цветок, не играет роли, поскольку для оплодотворения достаточно одного пыльцевого зерна. В 1977 году В. Геодакян предположил, что количество пыльцы, попадающее на женский цветок, может нести также и экологическую информацию о ситуации в ареале[5][6]. Большое количество пыльцы говорит об оптимальных условиях среды (центр ареала, много мужских растений, хорошие условия для роста и погода), тогда как малое количество пыльцы, наоборот, несет информацию о неблагоприятных условиях: это бывает либо на периферии, где сильно падает плотность популяции, либо в центре, при наступлении там экстремальных условий, которые элиминируют в первую очередь мужских особей.

Количество пыльцы может определять соотношение полов, дисперсию и половой диморфизм популяции растений. Большое количество пыльцы приводит к уменьшению этих характеристик и стабилизации популяции. Малое количество ведет к их увеличению и дестабилизации популяции.

Зависимость вторичного соотношения полов от количества пыльцы было подтверждено у четырёх видов двудомных растений, принадлежащих к трём семействам,— Щавель кислый (Гречишные)[7][8], Дрёма белая (Гвоздичные)[9][10], Конопля посевная[11] и Хмель японский (Коноплёвые)[12][13]. С увеличением количества пыльцы уменьшается число мужских растений в потомстве и наоборот. Количество пыльцы зависит от плотности посадки растений, поэтому в густых посадках должна увеличиваться доля женских растений.

Зависимость разнообразия фенотипов потомства от количества пыльцы было обнаружено Д. Тер-Аванесяном в 1949 году у хлопчатника, вигны и пшеницы. У всех трёх видов при оплодотворении малым количеством пыльцы наблюдалось увеличение разнообразия потомства[14][15].

Роль пыльцы в жизни пчёл

thumb

После прохождения через пчелиные лапки пыльца становится обножкой, то есть пыльцой, которую пчёлы собрали и обработали своими ферментами.

Пыльца (пчелиная обножка) — это второй по объёму потребления и первый по значимости продукт питания пчелиной семьи. Пчёлы прикладывают немало усилий, чтобы запастись цветочной пыльцой, — этим бесценным и жизненно важным для них пищевым сырьём.

Пыльца как часть пищевой цепочки в животном мире — природный концентрат, содержащий белки, многие известные витамины, ценные минеральные вещества, а также полный набор незаменимых свободных аминокислот. По общему аминокислотному составу обножка близка к другим богатым белком пищевым продуктам — мясу, молоку, яйцам[16].

Благодаря пыльце масса вчерашней личинки возрастает в сотни раз всего за несколько дней, укрепляются и расправляются крылья, формируются все рабочие железы. Пыльца также служит сырьём для создания маточного молочка, продукта, предназначенного для кормления королевы-матки.

В пчелиной семье пыльца нужна в первую очередь пчёлам-кормилицам. Они интенсивно поедают этот белково-липидный корм, необходимый для выработки маточного молочка, которым питается молодая пчелиная матка и в первые 3 дня — личинки рабочих пчёл. Пыльцой питаются и только что родившиеся пчёлы: в их теле мало азота, они нуждаются в белках и витаминах. Пыльца нужна пчёлам-строителям для работы восковых желёз, трутням — для нормального полового созревания и функционирования. За сезон пчелиная семья собирает и потребляет 35—40 кг пыльцы обножки.

Микробиота пыльцевых зёрен

Показано, что для пыльцевых зёрен разных видов растений характерен специфический набор бактерий, обитающих на их поверхности (микробиом)[2][17][18][1][3].

Организация микробиоты пыльцевых зёрен

Метагеномное изучение микробиоты пыльце демонстрирует достаточно высокое разнообразие. Для четырёх видов растений: , , и показано существование более тысячи различных видов бактерий, представляющих около ста семейств[1].

Существенно, что культивируемые в лабораторных условиях формы составляют меньшинство из всей микробиоты пыльцевого зерна (для указанных выше растений — 44 вида, то есть менее 5%)[1]. Тем не менее, культивируемых бактерий на поверхности пыльцевых зёрен достаточно много - от 106 (берёза повислая) до 109 (безвременник осенний) клеток на грамм пыльцы[1].

Изучение поверхности пыльцевых зёрен с помощью сканирующей электронной микроскопии позволяет выявить колонии бактерий, организованные в том числе и в виде биоплёнок[2][1].

Взаимодействие растений с собственной микробиотой

Показано, что растение взаимодействует с собственным микробиомом, синтезируя, в частности, антимикробные пептиды (англ. antimicrobial peptides, AMPs)[3]. Среди антимикробных пептидов растений наиболее изучены и, по-видимому, наиболее распространены дефензин-подобные пептиды. Так, у примерно из 800 генов цистеин-обогащенных пептидов около трёхсот генов представляют собой именно гены дефензин-подобных пептидов[19]. Для дефензинов характерно наличие специфической третичной структуры с дисульфидным мостиком между остатками цистеина.

На важное значение антимикробных пептидов в пыльце указывает то, что 80 из 300 дефензин-подобных пептидов Arabidopsis thaliana гомологичны дефензин-подобному пептиду — PCP-A1, изолированному ранее из пыльцевой оболочки капусты (Brassica)[20]. Показано, что ряд антимикробных пептидов предотвращают самоопыление, взаимодействуя с рецепторами в тканях пестика[21], однако их влияние на микробиоту пыльцевого зерна изучено крайне мало.

У Arabidopsis thaliana показано, что по меньшей мере 200 из 800 генов цистеин-обогащенных пептидов экспрессируются в зародышевом мешке[22]. Предложена гипотеза, согласно которой данные пептиды обеспечивают противомикробный барьер для зародышевого мешка. Возможно, данный барьер изолирует зародышевый мешок от бактерий, способных проникнуть в него при росте пыльцевой трубки через завязь[3].

Следует уточнить, что также выявлены и функции некоторых антимикробных пептидов, не связанные с защитой от микроорганизмов и самоузнаванием при опылении. Изучен ряд пептидов, образующихся в клетке-синергиде и направляющих рост пыльцевой трубки; также определены антимикробные пептиды, инициирующие разрыв пыльцевой трубки при входе в зародышевый мешок[23].

Роль микробиома пыльцы во взаимодействии с животными

Остается плохо изученным взаимодействие микробиома пыльцы с опылителями, а также с иммунной системой человека при аллергической реакции на пыльцу[3].

Литература

  • Сладков А. Н. Морфология пыльцы и спор современных растений в СССР в связи с методами её практического применения — М. : Издательство Московского университета, 1962 — 256
  • Сладков А. Н. Введение в спорово-пыльцевой анализ — М. : Наука, 1967
  • Косенко Я. Микромир пыльцы — Цветоводство, 2008 — 4 — 16—17

См. также

Примечания

  1. Binoy Ambika Manirajan, Stefan Ratering, Volker Rusch, Andreas Schwiertz, Rita Geissler-Plaum Bacterial microbiota associated with flower pollen is influenced by pollination type, and shows a high degree of diversity and species-specificity — http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/1462-2920.13524/abstract — en — Environmental Microbiology, 2016-12-01 — 18 — 12 — 5161–5174 — 1462-2920 — 10.1111/1462-2920.13524
  2. H. Colldahl, L. Nilsson Possible relationship between some allergens (pollens, mites) and certain microorganisms (bacteria and fungi). A morphological study using the scanning electron-microscope — https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/4801569 — Acta Allergologica, October 1973 — 28 — 4 — 283–295 — 0001-5148
  3. Michael Zasloff Pollen has a microbiome: implications for plant reproduction, insect pollination and human allergies — http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/1462-2920.13661/abstract — en — Environmental Microbiology, 2017-01-01 — 19 — 1 — 1–2 — 1462-2920 — 10.1111/1462-2920.13661
  4. Большая советская энциклопедия / гл. ред. А. М. Прохоров : Советская энциклопедия, 1969—1978
  5. Геодакян В. А. (1977) Количество пыльцы как регулятор эволюционной пластичности перекрестноопыляющихся растений. ДАН СССР, т. 234, № 6. с. 1460—1463.
  6. Геодакян В. А. (1978) Количество пыльцы как передатчик экологической информации и регулятор эволюционной пластичности растений. Жypн. общ. биологии. 39 № 5, с. 743—753.
  7. Correns С. (1922) Geschlechtsbestimmung und Zahlenverhaltnis der Geschlechter beim Sauerampfer (Rumex acetosa). «Biol. Zbl.» 42, 465—480.
  8. Rychlewski J., Kazlmierez Z. (1975) Sex ratio in seeds of Rumex acetosa L. as a result of sparse or abundant pollination. «Acta Biol. Cracov» Scr. Bot., 18, 101—114.
  9. Correns C. (1928) Bestimmung, Vererbung und Verteilung des Geschlechter bei den hoheren Pflanzen. Handb. Vererbungswiss., 2, 1—138.
  10. Mulcahy D. L. (1967) Optimal sex ratio in Silene alba. «Heredity» 22 № 3, 41.
  11. Riede W. (1925) Beitrage zum Geschlechts- und Anpassungs-problem. «Flora» 18/19
  12. Kihara H., Hirayoshi J. (1932) Die Geschlechtschromosomen von Humulus japonicus. Sieb. et. Zuce. In: 8th Congr. Jap. Ass. Adv. Sci., p. 363—367 (cit.: Plant Breeding Abstr., 1934, 5, № 3, p. 248, ref. № 768).
  13. Геодакян В. А., Геодакян С. В. (1958) Существует ли отрицательная обратная связь в определении пола? Журнал общей биологии. 46 № 2, с. 201—216.
  14. Тер-Аванесян Д. В. (1949) Тр. по прикл. ботанике, генетике и селекции. 28 119.
  15. Ter-Avanesian D. V. (1978) Significance of pollen amount for fertilization. «Bull.Torrey Bot.Club.» 105 N 1, 2—8.
  16. Хисматуллина Н. З. Апитерапия — Пермь : Мобиле, 2005 — 74
  17. Robert R. Junker, Alexander Keller Microhabitat heterogeneity across leaves and flower organs promotes bacterial diversity — https://academic.oup.com/femsec/article/91/9/fiv097/847329 — FEMS Microbiology Ecology, 2015-09-01 — 91 — 9 — 0168-6496 — 10.1093/femsec/fiv097
  18. Andrea Obersteiner, Stefanie Gilles, Ulrike Frank, Isabelle Beck, Franziska Häring Pollen-Associated Microbiome Correlates with Pollution Parameters and the Allergenicity of Pollen — http://journals.plos.org/plosone/article?id — PLOS ONE, 2016-02-24 — 11 — 2 — e0149545 — 1932-6203 — 10.1371/journal.pone.0149545
  19. Kevin A. T. Silverstein, Michelle A. Graham, Timothy D. Paape, Kathryn A. VandenBosch Genome Organization of More Than 300 Defensin-Like Genes in Arabidopsis — http://www.plantphysiol.org/content/138/2/600 — en — Plant Physiology, 2005-06-01 — 138 — 2 — 600–610 — 0032-0889, 1532-2548 — 10.1104/pp.105.060079
  20. J. Doughty, S. Dixon, S. J. Hiscock, A. C. Willis, I. A. Parkin PCP-A1, a defensin-like Brassica pollen coat protein that binds the S locus glycoprotein, is the product of gametophytic gene expression — https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9707533 — The Plant Cell, August 1998 — 10 — 8 — 1333–1347 — 1040-4651
  21. June B. Nasrallah Recognition and Rejection of Self in Plant Reproduction — http://science.sciencemag.org/content/296/5566/305 — en — Science, 2002-04-12 — 296 — 5566 — 305–308 — 0036-8075, 1095-9203 — 10.1126/science.296.5566.305
  22. Matthew W. Jones-Rhoades, Justin O. Borevitz, Daphne Preuss Genome-Wide Expression Profiling of the Arabidopsis Female Gametophyte Identifies Families of Small, Secreted Proteins — http://journals.plos.org/plosgenetics/article?id — PLOS Genetics, 2007-10-12 — 3 — 10 — e171 — 1553-7404 — 10.1371/journal.pgen.0030171
  23. Tetsuya Higashiyama, Hidenori Takeuchi The Mechanism and Key Molecules Involved in Pollen Tube Guidance — http://www.annualreviews.org/doi/10.1146/annurev-arplant-043014-115635 — Annual Review of Plant Biology, 2015-04-29 — 66 — 1 — 393–413 — 1543-5008 — 10.1146/annurev-arplant-043014-115635

Ссылки